Làm Chủ Kỹ Thuật Duy Trì Canh Trường Vi Khuẩn: Hướng Dẫn Toàn Cầu

Canh trường vi khuẩn là nền tảng của vô số ứng dụng nghiên cứu và công nghiệp, từ việc phát triển các loại kháng sinh mới đến việc tìm hiểu các quá trình sinh học cơ bản. Việc duy trì đúng cách các canh trường này là cực kỳ quan trọng để đảm bảo kết quả đáng tin cậy, ngăn ngừa nhiễm bẩn và bảo tồn các chủng quý giá cho mục đích sử dụng trong tương lai. Hướng dẫn toàn diện này cung cấp một cái nhìn tổng quan chi tiết về các phương pháp tốt nhất để duy trì canh trường vi khuẩn, được thiết kế riêng cho các nhà nghiên cứu và chuyên gia trên toàn cầu.

Tại Sao Việc Duy Trì Canh Trường Lại Quan Trọng?

Việc duy trì canh trường hiệu quả không chỉ đơn giản là giữ cho vi khuẩn sống. Nó bao gồm việc bảo tồn các đặc tính mong muốn của chủng, đảm bảo độ tinh khiết và ngăn chặn sự tích tụ các đột biến di truyền. Các canh trường được duy trì kém có thể dẫn đến:

Kết Quả Thí Nghiệm Không Chính Xác: Những thay đổi trong cấu trúc di truyền của canh trường hoặc sự nhiễm bẩn có thể làm sai lệch kết quả thí nghiệm.
Mất Mát Các Chủng Quý Giá: Việc lơ là duy trì có thể dẫn đến cái chết hoặc sự biến đổi không thể đảo ngược của các chủng vi khuẩn quan trọng.
Tăng Chi Phí: Sự nhiễm bẩn đòi hỏi phải đặt hàng lại các chủng và lặp lại các thí nghiệm, dẫn đến gánh nặng tài chính đáng kể.
Tổn Hại Tính Toàn Vẹn Của Nghiên Cứu: Việc sử dụng các canh trường được đặc tính hóa kém hoặc bị nhiễm bẩn có thể làm tổn hại đến độ tin cậy của các kết quả nghiên cứu.

Các Kỹ Thuật Thiết Yếu để Duy Trì Canh Trường Vi Khuẩn

Một số kỹ thuật là thiết yếu để duy trì các canh trường vi khuẩn khỏe mạnh và đáng tin cậy. Chúng bao gồm cấy ria, pha loãng nối tiếp, cấy chuyền và bảo quản lạnh. Chúng ta sẽ tìm hiểu chi tiết từng kỹ thuật.

1. Cấy Ria để Phân Lập và Đảm Bảo Độ Tinh Khiết

Cấy ria là một kỹ thuật cơ bản để phân lập các khuẩn lạc đơn lẻ của vi khuẩn từ một canh trường hỗn hợp hoặc để đảm bảo độ tinh khiết của một canh trường hiện có. Phương pháp này bao gồm việc pha loãng mẫu vi khuẩn trên bề mặt đĩa thạch để thu được các khuẩn lạc riêng rẽ.

Quy trình:

Tiệt trùng que cấy của bạn: Hơ một que cấy vô trùng trên ngọn lửa cho đến khi nó nóng đỏ. Để nguội hoàn toàn trước khi sử dụng.
Lấy mẫu: Chạm nhẹ que cấy vào canh trường vi khuẩn.
Ria ở góc phần tư thứ nhất: Nhẹ nhàng ria que cấy trên một vùng nhỏ của đĩa thạch (góc phần tư 1).
Hơ và làm nguội que cấy: Hơ que cấy lại lần nữa và để nguội.
Ria ở góc phần tư thứ hai: Kéo que cấy qua vùng đã ria trước đó (góc phần tư 1) và ria sang một vùng mới của đĩa (góc phần tư 2).
Lặp lại cho các góc phần tư 3 và 4: Hơ và làm nguội que cấy, sau đó lặp lại quy trình cho các góc phần tư 3 và 4, mỗi lần kéo que cấy qua vùng đã ria trước đó.
Ủ: Ủ đĩa ở nhiệt độ thích hợp cho loài vi khuẩn đang được nuôi cấy.

Kết quả mong đợi: Các khuẩn lạc riêng rẽ sẽ xuất hiện ở các góc phần tư sau (thường là 3 và 4). Chọn một khuẩn lạc đơn lẻ, riêng rẽ để nuôi cấy thêm hoặc lưu trữ.

Sự khác biệt toàn cầu: Sự sẵn có của các đĩa thạch đổ sẵn có thể khác nhau giữa các phòng thí nghiệm trên toàn cầu. Mặc dù tiện lợi, chúng có thể đắt hơn. Nhiều phòng thí nghiệm, đặc biệt ở các nước đang phát triển, tự chuẩn bị đĩa thạch từ môi trường khô để giảm chi phí.

2. Pha Loãng Nối Tiếp để Đếm Chính Xác

Pha loãng nối tiếp được sử dụng để giảm nồng độ vi khuẩn trong mẫu, cho phép đếm chính xác số đơn vị hình thành khuẩn lạc (CFU) trên mỗi mililit. Kỹ thuật này rất cần thiết cho vi sinh vật học định lượng và xác định khả năng sống của một canh trường.

Quy trình:

Chuẩn bị ống pha loãng: Chuẩn bị một loạt các ống hoặc chai vô trùng chứa một thể tích đã biết của dung môi pha loãng vô trùng (ví dụ: dung dịch đệm phosphat, dung dịch nước muối). Các độ pha loãng phổ biến là 1:10 (10^-1), 1:100 (10^-2), 1:1000 (10^-3), v.v.
Thực hiện pha loãng nối tiếp: Chuyển một thể tích đã biết của canh trường vi khuẩn vào ống pha loãng đầu tiên. Trộn đều.
Lặp lại việc pha loãng: Chuyển cùng một thể tích từ ống pha loãng đầu tiên sang ống tiếp theo, trộn đều mỗi lần. Lặp lại quá trình này cho tất cả các ống pha loãng.
Cấy dịch pha loãng: Cấy một thể tích đã biết (ví dụ: 0.1 mL hoặc 1 mL) từ mỗi độ pha loãng lên đĩa thạch. Dàn đều dịch cấy trên bề mặt thạch.
Ủ: Ủ các đĩa ở nhiệt độ thích hợp cho loài vi khuẩn.
Đếm khuẩn lạc: Đếm số lượng khuẩn lạc trên các đĩa có từ 30-300 khuẩn lạc. Tính CFU/mL bằng công thức sau:

CFU/mL = (Số khuẩn lạc) / (Thể tích cấy tính bằng mL) x (Hệ số pha loãng)

Ví dụ: Nếu bạn cấy 0.1 mL từ độ pha loãng 10^-6 và đếm được 150 khuẩn lạc, CFU/mL sẽ là: (150 / 0.1) x 10⁶ = 1.5 x 10⁹ CFU/mL

Sự khác biệt toàn cầu: Loại dung môi pha loãng được sử dụng có thể thay đổi tùy theo sự sẵn có tại địa phương và sở thích của phòng thí nghiệm. Dung dịch đệm phosphat (PBS) thường được sử dụng, nhưng dung dịch nước muối hoặc thậm chí nước cất vô trùng cũng có thể là những lựa chọn thay thế phù hợp.

3. Cấy Chuyền để Duy Trì Khả Năng Sống

Cấy chuyền bao gồm việc chuyển vi khuẩn từ một canh trường hiện có sang một môi trường tăng trưởng mới. Quá trình này cung cấp cho vi khuẩn các chất dinh dưỡng mới và ngăn chặn sự tích tụ các sản phẩm thải độc hại, duy trì khả năng sống và sức sống của canh trường. Tần suất cấy chuyền phụ thuộc vào loài vi khuẩn và điều kiện bảo quản.

Quy trình:

Chuẩn bị môi trường mới: Chuẩn bị một môi trường tăng trưởng vô trùng (ví dụ: đĩa thạch hoặc canh thang).
Tiệt trùng que cấy của bạn: Hơ và làm nguội một que cấy vô trùng.
Chuyển vi khuẩn: Chạm nhẹ que cấy vào canh trường vi khuẩn và chuyển một lượng nhỏ vi khuẩn sang môi trường mới.
Ria hoặc cấy: Nếu sử dụng đĩa thạch, hãy ria vi khuẩn để phân lập. Nếu sử dụng canh thang, hãy cấy vào canh thang bằng cách khuấy que cấy.
Ủ: Ủ canh trường ở nhiệt độ thích hợp.

Tần suất: Đối với các canh trường đang phát triển tích cực, thường khuyến nghị cấy chuyền mỗi 1-2 tuần. Tuy nhiên, một số sinh vật khó tính có thể yêu cầu cấy chuyền thường xuyên hơn. Hãy cân nhắc thiết lập một lịch trình dựa trên nhu cầu cụ thể của canh trường của bạn.

Sự khác biệt toàn cầu: Loại môi trường được sử dụng để cấy chuyền phụ thuộc rất nhiều vào loài vi khuẩn cụ thể. Các môi trường tiêu chuẩn như LB (Lysogeny Broth) và thạch dinh dưỡng được sử dụng rộng rãi, nhưng có thể cần các môi trường chuyên biệt cho một số sinh vật nhất định. Việc tìm nguồn cung ứng môi trường chuyên biệt có thể là một thách thức ở một số khu vực, dẫn đến sự khác biệt trong các quy trình nuôi cấy.

4. Bảo Quản Lạnh để Lưu Trữ Lâu Dài

Bảo quản lạnh bao gồm việc đông lạnh các canh trường vi khuẩn ở nhiệt độ cực thấp (thường là -80°C hoặc trong nitơ lỏng) để bảo quản chúng trong thời gian dài. Phương pháp này làm ngừng hoạt động trao đổi chất, ngăn chặn sự trôi dạt di truyền và duy trì các đặc tính của canh trường. Bảo quản lạnh là tiêu chuẩn vàng để lưu trữ lâu dài các chủng vi khuẩn.

Quy trình:

Chuẩn bị chất bảo quản lạnh: Chuẩn bị dung dịch bảo quản lạnh, chẳng hạn như glycerol hoặc dimethyl sulfoxide (DMSO), ở nồng độ 10-20% trong môi trường tăng trưởng phù hợp. Glycerol thường được ưa chuộng hơn do độc tính thấp hơn.
Thu hoạch vi khuẩn: Thu hoạch vi khuẩn từ một canh trường tươi, đang phát triển tích cực.
Trộn với chất bảo quản lạnh: Trộn canh trường vi khuẩn với dung dịch bảo quản lạnh trong một lọ bảo quản lạnh vô trùng. Nồng độ cuối cùng của chất bảo quản lạnh nên là 10-20%.
Đông lạnh từ từ: Đông lạnh các lọ bảo quản lạnh một cách từ từ để giảm thiểu sự hình thành tinh thể đá, có thể làm hỏng tế bào. Một phương pháp phổ biến là đặt các lọ bảo quản lạnh trong hộp đông lạnh (ví dụ: một hộp xốp) ở -80°C qua đêm trước khi chuyển chúng vào nitơ lỏng để lưu trữ lâu dài. Một số phòng thí nghiệm sử dụng máy đông lạnh có kiểm soát tốc độ để làm mát chính xác hơn.
Lưu trữ trong Nitơ lỏng hoặc Tủ đông -80°C: Chuyển các lọ bảo quản lạnh vào nitơ lỏng (-196°C) hoặc tủ đông -80°C để lưu trữ lâu dài.

Phục Hồi Canh Trường Đông Lạnh:

Rã đông nhanh: Rã đông nhanh lọ bảo quản lạnh trong bể điều nhiệt 37°C.
Pha loãng và cấy: Ngay lập tức pha loãng canh trường đã rã đông trong môi trường tăng trưởng phù hợp và cấy lên đĩa thạch.
Ủ: Ủ đĩa ở nhiệt độ thích hợp.

Chủng Gốc Glycerol: Một Ví Dụ Thực Tế

Giả sử bạn có một canh trường Escherichia coli mà bạn muốn bảo quản. Bạn sẽ:

Nuôi cấy E. coli trong canh thang LB qua đêm.
Trộn 0.5 mL canh trường qua đêm với 0.5 mL glycerol 50% vô trùng trong một lọ bảo quản lạnh (tạo ra nồng độ glycerol cuối cùng là 25%).
Đặt lọ bảo quản lạnh vào tủ đông -80°C qua đêm, sau đó chuyển sang nitơ lỏng để lưu trữ lâu dài.

Sự khác biệt toàn cầu: Sự sẵn có của nitơ lỏng có thể bị hạn chế ở một số khu vực, làm cho tủ đông -80°C trở thành lựa chọn chính để bảo quản lạnh. Mặc dù lưu trữ ở -80°C không lý tưởng bằng nitơ lỏng, nó vẫn có thể cung cấp sự bảo quản lâu dài hiệu quả nếu được thực hiện đúng cách. Chất lượng và việc bảo trì các tủ đông -80°C cũng là những yếu tố quan trọng, vì sự dao động nhiệt độ có thể làm ảnh hưởng đến khả năng sống của các canh trường đông lạnh.

Xử Lý Các Sự Cố Thường Gặp Trong Việc Duy Trì Canh Trường

Mặc dù đã tuân thủ các phương pháp tốt nhất, các vấn đề vẫn có thể phát sinh trong quá trình duy trì canh trường. Dưới đây là một số vấn đề thường gặp và giải pháp của chúng:

1. Nhiễm bẩn

Nhiễm bẩn là một mối quan tâm lớn trong nuôi cấy vi khuẩn. Nó có thể do vi khuẩn, nấm, hoặc các vi sinh vật khác vô tình xâm nhập vào canh trường.

Dấu hiệu nhiễm bẩn:

Độ đục trong canh thang: Độ đục hoặc cặn không mong muốn trong canh thang.
Hình thái khuẩn lạc bất thường: Các khuẩn lạc có hình dạng, kích thước hoặc màu sắc khác với mong đợi.
Sự phát triển của nấm: Sự phát triển dạng sợi hoặc mốc trên đĩa thạch.
Mùi khó chịu: Mùi hôi hoặc bất thường tỏa ra từ canh trường.

Phòng ngừa:

Kỹ thuật vô trùng: Tuân thủ nghiêm ngặt kỹ thuật vô trùng là tối quan trọng. Điều này bao gồm việc tiệt trùng tất cả các vật liệu và làm việc trong một môi trường vô trùng (ví dụ: một tủ cấy an toàn sinh học).
Môi trường và vật tư vô trùng: Chỉ sử dụng môi trường, nước và vật tư tiêu hao vô trùng.
Giám sát thường xuyên: Thường xuyên kiểm tra canh trường để tìm các dấu hiệu nhiễm bẩn.
Tiệt trùng bằng màng lọc: Tiệt trùng bằng màng lọc các môi trường và dung dịch nhạy cảm với nhiệt.

Khắc phục:

Loại bỏ các canh trường bị nhiễm bẩn: Nếu một canh trường bị nhiễm bẩn, nên loại bỏ nó ngay lập tức. Đừng cố gắng cứu vãn nó.
Xác định nguồn gốc: Cố gắng xác định nguồn gốc của sự nhiễm bẩn để ngăn chặn các sự cố trong tương lai.
Vệ sinh thiết bị: Vệ sinh kỹ lưỡng tất cả các thiết bị và bề mặt có thể đã tiếp xúc với nguồn nhiễm bẩn.

Sự khác biệt toàn cầu: Sự sẵn có và chi phí của tủ cấy an toàn sinh học có thể khác nhau đáng kể giữa các khu vực. Trong các môi trường có nguồn lực hạn chế, các nhà nghiên cứu có thể cần phải dựa vào các chiến lược thay thế để duy trì sự vô trùng, chẳng hạn như làm việc trong một khu vực sạch được chỉ định và sử dụng máy tiệt trùng UV di động.

2. Mất Khả Năng Sống

Các canh trường vi khuẩn có thể mất khả năng sống do cạn kiệt chất dinh dưỡng, tích tụ các sản phẩm thải độc hại, hoặc điều kiện bảo quản không phù hợp.

Dấu hiệu mất khả năng sống:

Tăng trưởng chậm: Tốc độ tăng trưởng giảm so với các canh trường trước đó.
Hình thành khuẩn lạc kém: Các khuẩn lạc nhỏ hoặc không rõ nét trên đĩa thạch.
Không tăng trưởng: Không phát triển khi được cấy chuyền.

Phòng ngừa:

Cấy chuyền thường xuyên: Cấy chuyền canh trường thường xuyên để cung cấp chất dinh dưỡng mới và loại bỏ các sản phẩm thải.
Điều kiện bảo quản thích hợp: Lưu trữ canh trường ở nhiệt độ và độ ẩm thích hợp.
Bảo quản lạnh: Bảo quản lạnh các canh trường để lưu trữ lâu dài.

Khắc phục:

Kiểm tra môi trường: Đảm bảo rằng môi trường tăng trưởng vẫn còn hiệu quả và chưa hết hạn.
Tối ưu hóa điều kiện tăng trưởng: Tối ưu hóa các điều kiện tăng trưởng, chẳng hạn như nhiệt độ, pH và sục khí.
Phục hồi từ chủng gốc đông lạnh: Nếu canh trường đã mất khả năng sống, hãy phục hồi nó từ các chủng gốc đông lạnh nếu có.

3. Trôi Dạt Di Truyền

Trôi dạt di truyền đề cập đến sự tích tụ các đột biến di truyền trong một canh trường theo thời gian. Điều này có thể làm thay đổi các đặc tính của chủng và ảnh hưởng đến kết quả thí nghiệm.

Dấu hiệu của trôi dạt di truyền:

Thay đổi về kiểu hình: Thay đổi về hình thái khuẩn lạc, tốc độ tăng trưởng hoặc các đặc điểm có thể quan sát được khác.
Mất plasmid: Mất các plasmid chứa các gen quan trọng.
Thay đổi tính kháng kháng sinh: Thay đổi trong phổ kháng kháng sinh.

Phòng ngừa:

Giảm thiểu cấy chuyền: Giảm số lần cấy chuyền để giảm thiểu cơ hội tích lũy đột biến.
Bảo quản lạnh: Bảo quản lạnh các canh trường sớm và sử dụng chúng làm nguồn chính cho các thí nghiệm.
Đặc tính hóa thường xuyên: Định kỳ đặc tính hóa các canh trường để theo dõi những thay đổi trong thuộc tính của chúng.

Khắc phục:

Phục hồi từ các chủng gốc ban đầu: Nếu nghi ngờ có sự trôi dạt di truyền, hãy phục hồi các canh trường từ các chủng gốc đông lạnh sớm hơn.
Tái phân lập chủng: Tái phân lập chủng từ một khuẩn lạc duy nhất để có được một quần thể đồng nhất.

Các Phương Pháp Tốt Nhất cho Môi Trường Phòng Thí Nghiệm Toàn Cầu

Việc thực hiện các phương pháp tốt nhất là rất quan trọng để duy trì canh trường một cách nhất quán và đáng tin cậy tại các phòng thí nghiệm trên toàn thế giới. Các phương pháp này giải quyết cả các khía cạnh kỹ thuật và các yếu tố tổ chức ảnh hưởng đến chất lượng canh trường.

1. Các Quy Trình Chuẩn Hóa

Thiết lập và duy trì các quy trình chuẩn hóa cho tất cả các thủ tục duy trì canh trường. Điều này đảm bảo tính nhất quán và khả năng tái lập giữa các nhà nghiên cứu và phòng thí nghiệm khác nhau. Các quy trình nên bao gồm hướng dẫn chi tiết, danh sách các vật liệu cần thiết và các tiêu chí rõ ràng để đánh giá chất lượng canh trường.

Hợp tác toàn cầu: Khi hợp tác với các nhóm nghiên cứu quốc tế, hãy chia sẻ và so sánh các quy trình để xác định các nguồn biến đổi tiềm năng và hài hòa hóa các thủ tục.

2. Các Biện Pháp Kiểm Soát Chất Lượng

Thực hiện các biện pháp kiểm soát chất lượng để theo dõi sức khỏe và độ tinh khiết của các canh trường vi khuẩn. Điều này bao gồm:

Nhuộm Gram thường xuyên: Thực hiện nhuộm Gram để kiểm tra độ tinh khiết và xác định bất kỳ sinh vật gây nhiễm nào.
Phân tích đường cong tăng trưởng: Theo dõi tốc độ tăng trưởng của các canh trường để phát hiện bất kỳ thay đổi nào về khả năng sống hoặc đặc điểm tăng trưởng.
Kiểm tra độ nhạy kháng sinh: Định kỳ kiểm tra độ nhạy kháng sinh của các canh trường để theo dõi sự phát triển của tính kháng thuốc.
Phân tích kiểu gen: Cân nhắc thực hiện phân tích kiểu gen (ví dụ: PCR, giải trình tự) để xác nhận danh tính của chủng và phát hiện bất kỳ đột biến di truyền nào.

Tiêu chuẩn quốc tế: Tuân thủ các tiêu chuẩn được công nhận quốc tế về kiểm soát chất lượng, chẳng hạn như các tiêu chuẩn được thiết lập bởi American Type Culture Collection (ATCC) hoặc các tổ chức liên quan khác.

3. Ghi Nhãn và Lưu Trữ Hồ Sơ Đúng Cách

Lưu giữ hồ sơ tỉ mỉ về tất cả các hoạt động duy trì canh trường. Điều này bao gồm:

Nhận dạng chủng: Ghi nhãn rõ ràng tất cả các canh trường với tên chủng, ngày gốc, số lần cấy chuyền và bất kỳ thông tin liên quan nào khác.
Lịch sử cấy chuyền: Theo dõi lịch sử cấy chuyền của mỗi canh trường, bao gồm ngày của mỗi lần cấy chuyền và môi trường đã sử dụng.
Vị trí lưu trữ: Ghi lại vị trí của tất cả các chủng gốc đông lạnh.
Sự kiện nhiễm bẩn: Ghi lại bất kỳ sự kiện nhiễm bẩn nào và các bước đã thực hiện để giải quyết chúng.

Cơ sở dữ liệu kỹ thuật số: Sử dụng cơ sở dữ liệu kỹ thuật số hoặc hệ thống quản lý thông tin phòng thí nghiệm (LIMS) để quản lý thông tin canh trường một cách hiệu quả và an toàn. Điều này tạo điều kiện cho việc chia sẻ dữ liệu và hợp tác giữa các phòng thí nghiệm.

4. Đào Tạo và Giáo Dục

Cung cấp đào tạo toàn diện cho tất cả nhân viên tham gia vào việc duy trì canh trường. Điều này bao gồm hướng dẫn về kỹ thuật vô trùng, xử lý canh trường, khắc phục sự cố và lưu giữ hồ sơ. Nhấn mạnh tầm quan trọng của việc tuân thủ các quy trình chuẩn hóa và duy trì hồ sơ chính xác.

Giáo dục thường xuyên: Khuyến khích tham gia các hội thảo, hội nghị và các nguồn tài liệu trực tuyến để cập nhật những tiến bộ mới nhất trong việc duy trì canh trường và vi sinh vật học.

5. Phân Bổ Nguồn Lực

Đảm bảo có đủ nguồn lực cho việc duy trì canh trường. Điều này bao gồm:

Thiết bị: Cung cấp quyền truy cập vào các thiết bị thiết yếu, chẳng hạn như nồi hấp, tủ ấm, tủ cấy an toàn sinh học và tủ đông.
Vật tư: Duy trì nguồn cung cấp đầy đủ môi trường vô trùng, vật tư tiêu hao và các chất bảo quản lạnh.
Nhân sự: Phân bổ đủ thời gian nhân sự cho các hoạt động duy trì canh trường.

Quan hệ đối tác toàn cầu: Tìm kiếm sự hợp tác với các tổ chức hoặc viện nghiên cứu quốc tế để tiếp cận các nguồn lực và chuyên môn có thể không có sẵn tại địa phương.

Kết Luận

Việc làm chủ kỹ thuật duy trì canh trường vi khuẩn là điều cần thiết cho các nghiên cứu, ứng dụng công nghiệp và giáo dục đáng tin cậy và có thể tái lập. Bằng cách thực hiện các kỹ thuật, chiến lược khắc phục sự cố và các phương pháp tốt nhất được nêu trong hướng dẫn này, các nhà nghiên cứu và chuyên gia trên toàn thế giới có thể đảm bảo khả năng sống, độ tinh khiết và sự ổn định lâu dài của các canh trường vi khuẩn của họ. Tuân thủ các quy trình chuẩn hóa, duy trì hồ sơ tỉ mỉ và nuôi dưỡng văn hóa kiểm soát chất lượng là chìa khóa để đạt được kết quả nhất quán và đáng tin cậy trong lĩnh vực vi sinh vật học không ngừng phát triển.

Bằng cách áp dụng một góc nhìn toàn cầu và điều chỉnh các hướng dẫn này cho phù hợp với nguồn lực và điều kiện địa phương, chúng ta có thể cùng nhau nâng cao hiểu biết về thế giới vi sinh vật và khai thác tiềm năng của nó vì lợi ích của nhân loại.